115年:(醫檢)生化(1)

有關數位 PCR(digital PCR, dPCR )的技術原理及應用,下列敘述何者最不適當?

A運用樣本分割( sample partitioning )技術,每個 DNA分子在分割單元內進行獨立的PCR擴增反應
B採用二進制定量( binary quantification )分析,對樣本 DNA進行相對定量
C此技術是進行 PCR反應後,偵測分割單元內的螢光訊號
D此技術具有極高的敏感度( sensitivity ),適合檢測樣本中低拷貝數的標靶DNA

詳細解析

本題觀念:

本題考查 數位 PCR(Digital PCR, dPCR) 的核心運作原理及其與傳統 qPCR 的主要差異。 dPCR 的核心概念是 「樣本分割(Partitioning)」「泊松統計(Poisson statistics)」。將反應液分割成成千上萬個微小的獨立反應單元(如油包水滴或微孔),使每個單元中預期只含有一個或零個目標 DNA 分子。經過 PCR 擴增後,直接偵測每個單元的螢光訊號有無(陽性/陰性),並利用統計學計算出目標分子的絕對拷貝數

選項分析

  • A. 運用樣本分割(sample partitioning)技術,每個 DNA分子在分割單元內進行獨立的PCR擴增反應
    • 正確(適當)。 這是 dPCR 的定義性步驟。樣本被物理分割成數萬個微滴(droplets)或微孔(microwells),目的是將背景 DNA 與目標 DNA 分開,讓每個單元進行獨立的 PCR 反應。
  • B. 採用二進制定量(binary quantification)分析,對樣本 DNA進行相對定量
    • 錯誤(不適當)。
      • 前半句「二進制定量」是正確的,因為 dPCR 是判讀每個分割單元是「有螢光(1, positive)」還是「無螢光(0, negative)」。
      • 後半句**「相對定量」是錯誤的**。dPCR 最顯著的優勢在於它不需要標準檢量線(standard curve),直接通過泊松分佈(Poisson distribution)計算出樣本中的絕對濃度(Absolute Quantification)。相對定量(Relative Quantification)通常是指 Real-time PCR (qPCR) 透過比較 Ct 值(如 ΔΔCt\Delta\Delta Ct 法)來計算基因表現量的差異。
  • C. 此技術是進行 PCR反應後,偵測分割單元內的螢光訊號
    • 正確(適當)。 dPCR 屬於 終點法(End-point) 偵測。它不需要像 qPCR 那樣即時監控擴增曲線,而是在 PCR 循環全部結束後,一次性讀取所有分割單元的螢光訊號。
  • D. 此技術具有極高的敏感度(sensitivity),適合檢測樣本中低拷貝數的標靶DNA
    • 正確(適當)。 透過分割樣本,dPCR 能有效降低背景野生型 DNA 的干擾(提高信噪比),特別適合偵測 稀有突變(Rare mutations,如液態切片中的 ctDNA)低拷貝數(Low copy number) 的目標序列,其靈敏度與精確度通常優於傳統 qPCR。

答案解析

正確答案為 (B)。 dPCR 的核心價值在於提供 絕對定量(Absolute Quantification),而非相對定量。雖然其訊號判讀是基於二進位(陽性/陰性)的邏輯,但最終計算結果是絕對的分子數量(copies/µL)。

核心知識點

醫檢師國考針對分子診斷技術的重點比較:

特性Real-time PCR (qPCR)Digital PCR (dPCR)
定量方式相對定量 (常用) / 絕對定量 (需標準曲線)絕對定量 (無需標準曲線)
原理核心監測擴增曲線 (Ct值/Cq值)樣本分割 (Partitioning) + 泊松統計
偵測時間點即時 (Real-time, 每一循環)終點 (End-point, 反應結束後)
數據判讀類比訊號 (連續強度)數位訊號 (0 或 1, Binary)
主要優勢動態範圍廣、通量高、成本較低靈敏度極高、耐受抑制劑、不需標準品
臨床應用病毒負荷量、基因表現分析微量殘存疾病 (MRD)稀有突變 (Liquid biopsy)、拷貝數變異 (CNV)

參考資料

  1. Introduction to Digital PCR | Bio-Rad
  2. Digital PCR vs. Real-Time PCR (qPCR) | Thermo Fisher Scientific
  3. Digital PCR: A Technology Review